형질전환 동물 생산에 있어서 타깃 유전자의 적중 기술에 의한 유전자 편집 수정란의 생산 효율이 매우 낮으며, 유전자 적중 여부 확인, 분석 및 품질 개선 등과 같은 연구가 필요하다. 따라서 본 연구에서는 유전자 편집 수정란의 지속적인 생산을 위한 미세주입 기술 조건 구축과 유전자 적중 효율 개선 등에 대한 실험을 수행하였다. 우선적으로 타깃 유전자 도입을 위한 미세주입기술에서 사용되고 있는 유전자 편집 기술인 CRISPR/Cas9 시스템의 nuclease을 Cas9 protein과 mRNA 두 군으로 나누어 실험을 수행하였다. 미세주입된 배반포들의 GFP 발현 및 유전자 적중율을 확인해 본 결과, Cas9 protein을 사용한 군에서 그 효율이 mRNA를 사용한 군보다 높게 나타남을 확인할 수 있었다. 다음으로 미세주입과정에서 세포막에 발생되는 물리적 손상을 줄여준다고 알려진 cytochalasin B(CB)가 첨가된 용액에서 수정란에 미세주입을 실시한 후 배반포 단계까지 발달율을 조사하였다. 그 결과, CB를 첨가한 수정란에서 배반포 발달율(18.5±2.0%)이 CB를 첨가하지 않은 대조구(13.1±1.6%) 보다 유의적으로 증가하였다(p<0.05). 이후, 수정란의 배반포로의 발달과 품질 향상에 도움을 준다고 알려진 멜라토닌을 이용하여 CB 처리하에 미세주입된 수정란의 체외배양을 실시하였다. 예상대로, 멜라토닌을 첨가한 그룹에서 배반포 발달율(23.8±4.9%)이 멜라토닌을 첨가하지 않은 대조구(18.2±2.2%) 보다 유의적으로 증가하였다(p<0.05). 또한, 미세주입된 배반포를 대상으로 DNA 손상 단백질인 H2AX139ph와 DNA 복구 단백질인 RAD51을 이용하여 면역형광염색법을 진행한 결과, 멜라토닌을 첨가한 그룹에서 RAD51의 양성 세포수가 증가함을 확인하였다. 결론적으로 본 연구결과는 타깃 유전자 도입을 위한 효율적인 미세주입 조건과 높은 품질의 배반포 생산 체계를 구축함으로써 유전자 편집 수정란의 지속적이고 안정적인 생산과 형질전환 동물 생산에 기여할 수 있을 것으로 기대된다.
유전자 편집 수정란의 지속적인 생산을 위한 미세주입 기술 조건 구축과 유전자 적중 효율 개선 등에 대한 실험을 수행하였다. 다음으로 미세주입과정에서 세포막에 발생되는 물리적 손상을 줄여준다고 알려진 cytochalasin B(CB)가 첨가된 용액에서 수정란에 미세주입을 실시한 후 배반포 단계까지 발달율을 조사하였다. 타깃 유전자 도입을 위한 효율적인 미세주입 조건과 높은 품질의 배반포 생산 체계를 구축함으로써 유전자 편집 수정란의 지속적이고 안정적인 생산과 형질전환 동물 생산에 기여할 수 있을 것으로 보인다.
